在每管中均加入5mL蒽酮试剂，沸水浴中10min，期间摇晃几次，结束后冰水浴冷却，620nm波长下测定吸光值。

2.1.2 蛋白质含量测定[4]

称样品0.01g，加5毫升蒸馏水并研磨，4000r/min离心10分钟，集液。残渣中加入5毫升蒸馏水，4000r/min离心10分钟，取合并后的上清液1毫升，往其中加5毫升考马斯亮蓝G-250，放置2分钟，于595nm波长下测。

蛋白质含量（mg/g）=计算得到的蛋白质含量（μg）×稀释倍数×10-3/样品质量（g）

蛋白标准曲线制作

取6支试管，按照如下所述比不同浓度的标准蛋白溶液。

管号 1 2 3 4 5 6

100μg/mL标准蛋白溶液/mL 0 0.2 0.4 0.6 0.8 1

蒸馏水/mL 1 0.8 0.6 0.4 0.2 0

蛋白含量/（μg/mL） 0 20 40 60 80 100

各个管均加入考马斯亮蓝G-2505mL，静置2min，于595nm波长下测。

2.2 部分代谢酶活性的测定

2.2.1 α-淀粉酶活性测定[5]

称取0.01 g样品，加入2mL蒸馏水研磨至匀浆，再用6mL蒸馏水冲洗匀浆器，倒入到试管中，于室温下置放提取液15min（其间每几分钟震荡试管一次）。离心（3000r/min）十分钟，上清移到0.1L容量瓶，定容得到淀粉酶原液。

   取3支干净试管并标记，根据下表操作。540nm波长下测。

操作项目 α-淀粉酶活力测定

1 2 3

淀粉酶原液/mL 1 1 1

置70℃水浴15min，冷却

淀粉酶稀释液/mL 0 0 0

3，5-二硝基水杨酸/mL 2 0 0

预保温，将各试管和淀粉溶液置于40℃恒温水浴中保温10min

1%淀粉溶液/mL 1 1 1

保温，在40℃恒温水浴中准确保温5min

3，5-二硝基水杨酸/mL 0 2 2

震荡均匀，置沸水中水浴5min，之后冷却，各个管取1mL并用蒸馏水稀释至5mL，1号管用于空白调零，在540nm波长下测。

α-淀粉酶活性（U/g）=计算得到的麦芽糖含量（mg）×酶原液总体积（mL）×稀释倍数/（样品质量（g）×测定所用酶液体积（mL）×反应时间（min））

以每分钟生成1 mg麦芽糖所需的酶量作为α-淀粉酶的一个酶活性单位（U），即1 U=1 mg/min。